人源飼養(yǎng)層對(duì)人胚胎干細(xì)胞生長(zhǎng)的影響
【摘要】目的:選擇最佳人源飼養(yǎng)層,并檢測(cè)不同組織來(lái)源的人源飼養(yǎng)層細(xì)胞堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)的分泌情況,探討其水平與人胚胎干細(xì)胞(hESCs)生長(zhǎng)是否相關(guān)。方法:原代培養(yǎng)包皮真皮、子宮內(nèi)膜基質(zhì)、絨毛、輸卵管、胎兒真皮、胎兒肌肉及胎鼠成纖維細(xì)胞(MEFs);按組織來(lái)源分為7組(MEFs為對(duì)照),同期接種同一株hESCs,從飼養(yǎng)層細(xì)胞密度、絲裂霉素作用時(shí)間等,尋找不同飼養(yǎng)層適合hESCs生長(zhǎng)的最佳條件;按人體組織分6組,ELISA方法檢測(cè)各種人源飼養(yǎng)層細(xì)胞分泌的bFGF。結(jié)果:根據(jù)飼養(yǎng)層細(xì)胞生長(zhǎng)特性,飼養(yǎng)層從優(yōu)到劣依次為:包皮、子宮內(nèi)膜、絨毛、輸卵管、胎皮、胎肌;根據(jù)hESCs生長(zhǎng)狀況,飼養(yǎng)層排序?yàn)椋喊ぁ⑤斅压?、子宮內(nèi)膜、絨毛、胎肌、胎皮。輸卵管、包皮、絨毛、胎肌、子宮內(nèi)膜、胎皮分泌的bFGF(pg•10-5•mL-1)分別為13.23;3.39,1.99;0.17,1.40;0.17,2.02;1.59,0.38;0.28,0.29;0.29。輸卵管與其它組織細(xì)胞分泌的bFGF差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);包皮、絨毛、胎肌之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),與子宮內(nèi)膜、胎皮差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);子宮內(nèi)膜與胎皮之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)論:包皮來(lái)源的飼養(yǎng)層最佳,輸卵管細(xì)胞分泌的bFGF量最高,飼養(yǎng)層細(xì)胞自身分泌的bFGF和hESCs生長(zhǎng)無(wú)必然相關(guān)性。
【關(guān)鍵詞】人源飼養(yǎng)層;人胚胎干細(xì)胞;堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子
基礎(chǔ)與臨床研究表明,胚胎干細(xì)胞(humanembryonicstemcells,hESCs)及其衍生細(xì)胞移植后可以有效修復(fù)受損組織①⑤。而hESCs增殖需要營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)及生長(zhǎng)因子,鼠胚胎成纖維細(xì)胞(mouseembryonicfibroblasts,MEFs)制作飼養(yǎng)層是最早和最常用的方法⑥⑦。然而,MEFs可能將鼠類病毒傳染給患者,干細(xì)胞治療人類疾病時(shí),必須要求無(wú)動(dòng)物源性培養(yǎng)。近幾年,人胚胎成纖維、包皮、輸卵管上皮、子宮內(nèi)膜等組織來(lái)源的細(xì)胞⑧⑩,均有報(bào)道可以支持hESCs的生長(zhǎng),但對(duì)于各種人源飼養(yǎng)層的評(píng)價(jià)尚存在爭(zhēng)議,各實(shí)驗(yàn)室結(jié)論不同。為選擇最佳人源飼養(yǎng)層,引導(dǎo)人源組織的取舍和應(yīng)用,本研究選用包皮、子宮內(nèi)膜、絨毛、輸卵管、胎兒皮膚、肌肉,6種不同的胎兒、小兒及成人組織作飼養(yǎng)層,以MEFs為對(duì)照,比較了它們對(duì)人胚胎干細(xì)胞的支持情況。MEFs促進(jìn)增殖作用主要是由于能分泌成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(fibroblastgrowthfactor,F(xiàn)GF)等促有絲分裂因子,但人源飼養(yǎng)層中生長(zhǎng)因子含量復(fù)雜,哪些因子可促進(jìn)hESCs增殖和抑制分化目前尚未明了。一般認(rèn)為添加外源性合成的(basicfibroblastgrowthfactor,bFGF)有利于hESCs的生長(zhǎng),但飼養(yǎng)層細(xì)胞自身分泌的bFGF和hESCs生長(zhǎng)是否存在相關(guān)性呢?我們測(cè)定了不同人源飼養(yǎng)層細(xì)胞分泌的bFGF,首次嘗試從飼養(yǎng)層細(xì)胞自身分泌的bFGF角度探討其與支持hESCs的生長(zhǎng)是否存在相關(guān)性。
1、材料與方法
1.1 材料
1.1.1hESCs本課題組 從人囊胚中分離培養(yǎng)并經(jīng)過(guò)鑒定的第30代細(xì)胞。
1.1.2 組織來(lái)源取自中山大學(xué)附屬一院。包皮:小兒外科的包皮環(huán)切術(shù);子宮內(nèi)膜:生殖中心子宮內(nèi)膜診刮術(shù);胎兒皮膚、肌肉:胎兒中心胎兒引產(chǎn)術(shù);輸卵管、絨毛:婦產(chǎn)科輸卵管切除術(shù)和胎兒流產(chǎn)術(shù);胎鼠購(gòu)自中山大學(xué)動(dòng)物中心。
1.1.3 試劑及培養(yǎng)液 HumanFGFBasicImmunoassayKit(DFB50RD,USA);成纖維細(xì)胞培養(yǎng)液:90%高糖DulbeccoModifiedEagleMedium(DMEM;invitrogen,USA),10%fetalbovineserum(FBS;Hyclone,USA),100IU/mL青霉素、100μg/mL鏈霉素(Sigma,USA);hESCs培養(yǎng)液:80%Knockout-DMEM,20%Knockout-SR,L-谷氨酰胺100×β-巰基乙醇1.8μl/mL(Invitrogen,USA),100IU/mL青霉素、100μg/mL鏈霉素、非必需氨基酸100×(Sigma,USA)。
1.2 方法
1.2.1 原代細(xì)胞 培養(yǎng)包皮、胎兒皮膚,胰酶過(guò)夜冷消化,取真皮膠原酶Ⅳ消化;胎兒肌肉、絨毛、胎鼠,0.25%胰酶消化;子宮內(nèi)膜,0.1%膠原酶I消化后,將腺體沉淀取基質(zhì)細(xì)胞;輸卵管,0.25%胰酶消化后,將基質(zhì)和上皮層分離,取基質(zhì)層用0.1%膠原酶Ⅳ消化。
1.2.2 最佳飼養(yǎng)層條件 選擇用10mg/L的絲裂霉素C分別作用各種細(xì)胞1h、1.5h、2h、2.5h、3h,用同一規(guī)格的培養(yǎng)皿,制作不同密度的飼養(yǎng)層,機(jī)械法將hESCs克隆切成3~16塊,轉(zhuǎn)移到鋪有飼養(yǎng)層的培養(yǎng)皿中,選擇最佳作用時(shí)間和密度。凍存大量同批次細(xì)胞備用,復(fù)蘇后計(jì)數(shù)鋪皿細(xì)胞數(shù)和未貼壁細(xì)胞數(shù),按絲裂霉素處理和未處理分2組,比較絲裂霉C對(duì)不同細(xì)胞復(fù)蘇率的影響。復(fù)蘇率=(鋪皿細(xì)胞數(shù)-未貼壁細(xì)胞數(shù))/鋪皿細(xì)胞數(shù)
1.2.3 飼養(yǎng)層 比較用同一規(guī)格的培養(yǎng)皿,接種相同的hESCs克隆數(shù),計(jì)算在各種飼養(yǎng)層最佳條件下hESCs的貼壁率、生長(zhǎng)率、分化率,比較飼養(yǎng)層優(yōu)劣。貼壁率=貼壁克隆/傳代克隆;生長(zhǎng)率=生長(zhǎng)克隆/貼壁克隆;分化率=(部分分化克隆+已分化克隆)/克隆總數(shù)。
1.2.4 bFGF檢測(cè) 10mg/L的絲裂霉素C作用各種細(xì)胞2h,計(jì)數(shù)后放入培養(yǎng)皿,3d后吸取培養(yǎng)液,離心取上清;利用酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)的雙抗體夾心法,按照DFB50RD試劑盒說(shuō)明操作。
1.2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以xs表示,應(yīng)用SPSS12.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理,采用單因素方差分析比較各實(shí)驗(yàn)組之間的差異性。
2、結(jié)果
2.1 不同飼養(yǎng)層細(xì)胞試用情況
hESCs的生長(zhǎng)形態(tài)及分化情況和飼養(yǎng)層細(xì)胞密度有關(guān),飼養(yǎng)層密度小,克隆薄、圓;飼養(yǎng)層密度大,克隆厚、沿纖維方向生長(zhǎng)。各種人源飼養(yǎng)層在一定程度上均可支持hESCs生長(zhǎng),以包皮較穩(wěn)定。
2.2 絲裂霉素C對(duì)不同細(xì)胞復(fù)蘇率的影響
對(duì)包皮、子宮內(nèi)膜、絨毛、MEFs等細(xì)胞復(fù)蘇率無(wú)明顯影響;胎兒肌肉、胎兒皮膚、輸卵管細(xì)胞處理后較未處理復(fù)蘇率變差(表2)。
2.3 hESCs的生長(zhǎng)狀態(tài)
未分化hESCs:細(xì)胞小圓形,排列緊密,核仁清楚;已分化細(xì)胞:細(xì)胞大,梭形或多角形,細(xì)胞排列疏松。未分化克隆:克隆中未分化細(xì)胞>80%,可繼續(xù)傳代;部分分化克?。嚎寺≈形捶只?xì)胞50%~80%,可通過(guò)機(jī)械法將未分化部分繼續(xù)傳代;已分化克?。嚎寺≈形捶只?xì)胞<50%,不能繼續(xù)傳代。
hESCs在包皮上貼壁率,生長(zhǎng)率和分化率和MEFs類似;在輸卵管上貼壁率波動(dòng)大,但分化率較低,形態(tài)較好;在胎皮、胎肌上貼壁率和生長(zhǎng)率較MEFs差。
貼壁率:包皮、MEFs之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),與其它組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);子宮內(nèi)膜、絨毛之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),和胎皮、胎肌、輸卵管差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);胎皮、胎肌差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)和輸卵管差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。
生長(zhǎng)率:包皮、MEFs之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),與其它組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);子宮內(nèi)膜、絨毛、輸卵管之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),與胎皮、胎肌差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);胎皮、胎肌差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
分化率:輸卵管和所有組之間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);其它組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)(表3,圖2)。
2.4 不同組織的飼養(yǎng)層細(xì)胞分泌bFGF結(jié)果
輸卵管與其它組間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),包皮、絨毛、胎肌之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);包皮、絨毛、胎肌與子宮內(nèi)膜、胎皮之間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);內(nèi)膜與胎皮之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。標(biāo)準(zhǔn)曲線r=0.99868說(shuō)明本次實(shí)驗(yàn)技術(shù)性誤差很小。
3、討論
1998年Thomson⑥首次報(bào)道從囊胚中獲得了hESCs,其發(fā)育全能性為細(xì)胞治療和組織替代等醫(yī)學(xué)領(lǐng)域帶來(lái)廣闊的研究前景,現(xiàn)在已成為生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域的熱點(diǎn)。傳統(tǒng)上,培養(yǎng)hESCs用MEFs、無(wú)限生長(zhǎng)系STO細(xì)胞做飼養(yǎng)層。由于混雜了小鼠細(xì)胞,且hESCs暴露于小鼠的逆轉(zhuǎn)錄病毒中,這必將給臨床應(yīng)用帶來(lái)麻煩。目前,無(wú)飼養(yǎng)層、無(wú)血清、無(wú)動(dòng)物源成分的培養(yǎng)體系尚不完善,飼養(yǎng)層仍是hESCs建系時(shí)不可缺少的因素。為了減少動(dòng)物源成分,人源飼養(yǎng)層研究是一個(gè)必要的過(guò)渡階段。本研究從人成纖維細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)、傳代情況與MEFs作比較,探討了人成纖維細(xì)胞用于培養(yǎng)hESCs的可行性。
所用不同組織來(lái)源的細(xì)胞,在傳代2、3次后形態(tài)均呈纖維狀,但生長(zhǎng)特性、老化進(jìn)程不同。包皮增殖力最旺盛,其中一株3歲男孩的包皮細(xì)胞傳55代,在40代時(shí)核型仍正常,與文獻(xiàn)報(bào)道至少可以傳42代才出現(xiàn)老化吻合。另外一株17歲男孩的包皮細(xì)胞,培養(yǎng)到32代時(shí)增殖力依然旺盛。子宮內(nèi)膜基質(zhì)和絨毛細(xì)胞傳15代,增殖能力無(wú)明顯減弱。輸卵管基質(zhì)細(xì)胞第四代增殖能力開(kāi)始下降,細(xì)胞出現(xiàn)老化,胞體增大、胞漿內(nèi)顆粒增多。胎兒皮膚和肌肉細(xì)胞增殖力居中,三代之后接觸抑制明顯,出現(xiàn)局部大片脫落,但細(xì)胞長(zhǎng)滿80%前仍可以繼續(xù)傳代,而其它細(xì)胞無(wú)抑制脫落現(xiàn)象。胎鼠成纖維細(xì)胞早代增殖力旺盛,可復(fù)層生長(zhǎng)而無(wú)接觸抑制,第四代之后,幾乎不再增殖,5代后細(xì)胞明顯老化。細(xì)胞形態(tài)與傳代密度有關(guān),密度適宜,形態(tài)較好;傳代過(guò)稀,增殖減慢,則胞體變大,胞漿內(nèi)顆粒增多,傳代周期變長(zhǎng)。人成纖維細(xì)胞和MEFs在體外均為貼壁生長(zhǎng)型細(xì)胞,與MEFs相比,人成纖細(xì)胞壽命更長(zhǎng),在生長(zhǎng)狀況上與MEFs類似,在使用期限上優(yōu)于后者。
本結(jié)論與大多數(shù)文獻(xiàn)報(bào)道包皮可以支持hESCs生長(zhǎng)、建系相符⑿⒁。但與2003年MarkRichards⒂認(rèn)為胎兒肌肉可作為最佳飼養(yǎng)層有異議,可能與細(xì)胞培養(yǎng)條件不同有關(guān)。本實(shí)驗(yàn)中,胎兒肌肉細(xì)胞接觸抑制明顯,易脫落,飼養(yǎng)層細(xì)胞本身狀態(tài)不佳。Richards描述胎兒肌肉較其它飼養(yǎng)層上的上hESCs克隆厚,本實(shí)驗(yàn)中觀察到hESCs的生長(zhǎng)形態(tài)及分化情況和飼養(yǎng)層細(xì)胞密度有關(guān),而與組織來(lái)源無(wú)明顯關(guān)系。無(wú)論哪種飼養(yǎng)層,飼養(yǎng)層細(xì)胞密度大,則hESCs克隆厚,形態(tài)除與切割形狀有關(guān)外,多沿纖維方向生長(zhǎng),反之則薄,呈圓形、橢圓形。
絲裂霉素處理后的各種飼養(yǎng)層,輸卵管細(xì)胞分泌的bFGF量最高,SPSS統(tǒng)計(jì)分析與其它組間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。但hESCs在包皮和輸卵管上生長(zhǎng)形態(tài)均好,說(shuō)明飼養(yǎng)層細(xì)胞自身分泌的bFGF和hESCs的生長(zhǎng)雖然可能有一定關(guān)系,但無(wú)必然相關(guān)性。表現(xiàn)為輸卵管細(xì)胞支持hESCs生長(zhǎng)時(shí)密度低,其它組織來(lái)源的細(xì)胞密度高。但也可能與輸卵管細(xì)胞體積較大有一定關(guān)系。當(dāng)然,細(xì)胞培養(yǎng)液中各種生長(zhǎng)因子含量甚微,各種因子協(xié)同作用復(fù)雜,需要聯(lián)合其它因素才能進(jìn)一步探討它們的作用。
雖然輸卵管分泌的bFGF較高,密度要求比MEFs低,傳代的hESCs分化少形態(tài)好,膠原酶消化效果與MEFs類似。但是輸卵管上生長(zhǎng)的hESCs貼壁率波動(dòng)很大,實(shí)驗(yàn)中曾有另一株hESCs超過(guò)50%以上的克隆不貼壁現(xiàn)象。這可能與hESCs系不同有關(guān),也可能與培養(yǎng)液的批次有關(guān)。另外,輸卵管需要篩選(比如排除惡性腫瘤患者),來(lái)源相對(duì)困難,且在第四代后增殖力明顯下降,老化較早,這些都限制了它的應(yīng)用。子宮內(nèi)膜增殖力相對(duì)旺盛,來(lái)源也很充足,所以也是一種值得推薦的飼養(yǎng)層;胎兒肌肉和皮膚,細(xì)胞本身傳代需要嚴(yán)格控制時(shí)間,否則會(huì)“集體自殺”——大片脫落,給實(shí)驗(yàn)帶來(lái)一定的不便。這種現(xiàn)象其它細(xì)胞尚未見(jiàn)發(fā)生。另外,在如今可以控制受孕的醫(yī)療條件下,引產(chǎn)的正常胎兒來(lái)源非常困難且涉及到倫理問(wèn)題。
盡管我們實(shí)驗(yàn)表明流產(chǎn)胎兒的絨毛也可以支持hESCs生長(zhǎng),國(guó)內(nèi)外尚未見(jiàn)報(bào)道,但絨毛取材相對(duì)困難,也牽涉到倫理問(wèn)題。所以,應(yīng)該倡議飼養(yǎng)層的選擇不在于標(biāo)新立異,而在于方便、適用。雖然似乎多種人源成纖維細(xì)胞在一定程度上均可支持hESCs生長(zhǎng),本研究顯示包皮可作為人源飼養(yǎng)層的首選,并且,我們?cè)诎ど铣晒Φ亟⒘艘恢晷碌膆ESCs系。包皮的優(yōu)勢(shì)體現(xiàn)在來(lái)源充足、屬醫(yī)療廢物,一般不需要病理檢查,無(wú)倫理學(xué)問(wèn)題;本身傳代久,增殖力強(qiáng),旺盛時(shí)可1:7傳代;不同包皮系、冷凍復(fù)蘇后及高代次細(xì)胞支持hESCs生長(zhǎng)的能力均無(wú)差異,實(shí)驗(yàn)中最高用到31代。而MEFs在第5代時(shí)增殖力即明顯下降呈老化狀態(tài),實(shí)驗(yàn)多用3~4代。與MEFs相比,包皮的儲(chǔ)備量是很驚人的,這就減輕了反復(fù)培養(yǎng)原代飼養(yǎng)層細(xì)胞的工作負(fù)荷。
現(xiàn)階段的培養(yǎng)方法尚不能在短期內(nèi)大量擴(kuò)增hESCs,減少動(dòng)物源性物質(zhì)只是基本前提,最終目標(biāo)是找到類似鼠胚胎干細(xì)胞培養(yǎng)中的骨形態(tài)發(fā)生蛋白拮抗劑Noggin和白血病抑制因子(leukemiainhibitoryfactor,LIF)作用的細(xì)胞因子⒃⒄,使hESCs的自我更新具有可控性,建立起無(wú)飼養(yǎng)層、無(wú)血清和無(wú)動(dòng)物來(lái)源成分的穩(wěn)定的、標(biāo)準(zhǔn)的培養(yǎng)體系。
【參考文獻(xiàn)】
[1]Cho MS,Hwang DY,Kim DW.Efficient derivation of functional dopaminergic neurons from human embryonic stem cells on a large scale [J].Nat Protoc,2008,3(12):1888-1894.
[2]Lu SJ,Ivanova Y,F(xiàn)eng Q,et al.Hemangioblasts from human embryonic stem cells generate multilayered blood vessels with functional smooth muscle cells [J].Regen Med,2009,4(1):37-47.
[3]Karner E,Backesjo CM,Cedervall J,et al.Dynamics of gene expression during bone matrix formation in osteogenic cultures derived from human embryonic stem cells in vitro [J].Biochim Biophys Acta,2009,1790(2):110-118.
[4]Mao GH,Chen GA,Bai HY,et al.The reversal of hyperglycaemia in diabetic mice using PLGA scaffolds seeded with islet-like cells derived from human embryonic stem cells [J].Biomaterials,2009,30(9):1706-1714.
[5]Li Z,Han Z,Wu JC.Transplantation of human embryonic stem cell-derived endothelial cells for vascular diseases [J].Cell Biochem,2009,106(2):194-199.
[6]Thomson JA,Itskovitz EJ,Shapiro SS,et al.Embryonic stem cell line derived from human blastocysts [J].Science,1998,282(5391):1145-1147.
[7]Inamdar MS,Venu P,Srinivas MS,et al.Derivation and characterization of two sibling human embryonic stem cell lines from discarded Grade III embryos[J]. Stem Cells Dev,2009,18(3):423-433.
[8]Kumar N,Hinduja I,Nagvenkar P,et al.Derivation and characterization of two genetically unique human embryonic stem cell lines on in-house derived human feeders [J].Stem Cells Dev,2009,18(3):435-445.
[9]Sidhu KS,Ryan JP,Tuch BE.Derivation of a new human embryonic stem cell line,endeavour-1,and its clonal propagation [J].Stem Cells Dev,2008,17(1): 41-51.
[10]Meng G,Liu S,Krawetz R,et al.A novel method for generating xeno-free human feeder cells for human embryonic stem cell culture [J].Stem Cells Dev, 2008,17(3):413-422.
[11]Lee JB,Lee JE,Park JH,et al.Establishment and maintenance of human embryonic stem cell lines on human feeder cells derived from uterine endometrium under serum-free condition [J].Biol Reprod,2005,72(1):42-49.
[12]Ellerstrom C,Strehl R,Moya K,et al.Derivation of a xeno-free human embryonic stem cell line [J].Stem Cells,2006,24(10):2170-2176.
[13]Stram S,Inzunza J,Grinnemo KH,et al.Mechanical isolation of the inner cell mass is effective in derivation of new human embryonic stem cell lines [J]. Hum Reprod,2007,22(12):3051-3058.
[14]Feki A,Bosman A,Dubuisson JB,et al.Derivation of the first Swiss human embryonic stem cell line from a single blastomere of an arrested four-cell stage embryo [J].Swiss Med Wkly,2008,138(37-38):540-550.
[15]Mark Richards.Comparative evaluation of various human feeders or prolonged undifferentiated growth of human embryonic stem cells [J].Stem Cells, 2003,21(7):546-556.
[16]Trouillas M,Saucourt C,Guillotin B,et al.Three LIF-dependent signatures and gene clusters with atypical expression profiles,identified by transcriptome studies in mouse ES cells and early derivatives [J].BMC Genomics,2009,10:73.
[17]Chiba S,Lee YM,Zhou W,et al.Noggin enhances dopamine neuron production from human embryonic stem cells and improves behavioral outcome after transplantation into Parkinsonian rats [J].Stem Cells,2008,26(11):2810-2820.